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Puromycin 嘌呤霉素(10 mg/mL)

简要描述:Puromycin 嘌呤霉素 PS610是无菌的 Puromycin 嘌呤霉素(10 mg/mL)盐酸盐溶液,经过滤除菌,可以直接用于细胞培养。

  • 产品型号:PS610
  • 产品价格:280¥
  • 厂商性质:生产厂家
  • 更新时间:2022-09-05
  • 访  问  量:297
详细说明:

品牌自营品牌供货周期现货
应用领域生物产业,制药,综合PS610-01规格1mL
PS610-05规格5mL

Puromycin(10mg/mL)

CatalogNumber:PS610



01/Puromycin嘌呤霉素PS610产品概述:

Puromycin是来源于Streptomycesalboniger的一种氨基核苷类抗生素,中文名为嘌呤霉素。嘌呤霉素是氨酰-tRNA分子3´末端的类似物,能够与核糖体的A位点结合并掺入到延伸的肽链中。嘌呤霉素同A位点结合后,不会参与随后的任何反应,从而导致蛋白质合成的提前终止并释放出C-末端含有嘌呤霉素的不成熟多肽,从而杀死革兰氏阳性菌、各种动物和昆虫细胞。

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Puromycin常用于筛选通过质粒转染、病毒感染、转化等方法能表达pac基因(puror)的真核或原核多克隆或单克隆细胞。pac基因编码嘌呤霉素N-乙酰转移酶(PAC,PuromycinN-acetyl-tranferase),赋予机体对嘌呤霉素产生抗性。这一特性目前普遍应用于筛选表达pac基因的哺乳动物稳定细胞株。嘌呤霉素在细胞稳转株筛选中的普遍应用与慢病毒载体的特性有关,现在很多商业化的慢病毒载体都携带pac基因(一般在质粒图谱上标记为puror),从而利用嘌呤霉素筛选特定基因的稳定表达细胞株。Puromycin的特点是快速作用于细胞,一般2天内可以杀死99%的不表达pac基因的细胞。Puromycin不仅用于稳定细胞株的筛选,也用于稳定细胞株的维持。在某些特定情况下,嘌呤霉素也可以用来筛选转化携带pac基因质粒的大肠杆菌菌株、酵母菌株等。

  本品是无菌的Puromycin嘌呤霉素(10mg/mL)盐酸盐溶液,经过滤除菌,可以直接用于细胞培养。



02/产品组分

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03/保存条件:冰袋(wetice)运输。-20℃保存,有效期12个月。建议分装保存,避免反复冻融。



04/产品特点

  即用型试剂,无需进行试剂配置,简单方便。

  无菌制剂,可直接加入细胞使用。



05/Puromycin 嘌呤霉素(10 mg/mL)实验步骤

一、Dose-responsecurveorkillcurve嘌呤霉素剂量反应曲线的确定(以shRNA转染或者慢病毒感染为例)

  嘌呤霉素的有效筛选浓度跟细胞类型、生长状态、细胞密度、细胞代谢及细胞所处细胞周期等因素相关。为了筛选到稳定表达的shRNA或感染病毒的细胞株,确定杀死未转染/感染细胞的最小浓度嘌呤霉素非常重要。对于初次使用的细胞,一般需要通过实验来确定适合自身实验体系的剂量反应曲线(dose-responsecurveorkillcurve)。

  1.提前一天在24孔板中以5~8×104cells/孔的密度接种细胞,设置剂量梯度及复孔,37℃5%CO2细胞培养箱内培养过夜。

  2.次日,将培养过夜后的细胞更换含不同浓度嘌呤霉素的筛选培养基(新鲜配置),如0、1、2.5、5、7.5、10、15、20μg/mL等浓度梯度,设置至少5个浓度梯度,37℃5%CO2细胞培养箱中继续培养。

  3.由于嘌呤霉素可以快速作用于细胞,一般2天内可以杀死99%的未表达pac基因的细胞,所以在添加嘌呤霉素后的1-2天就可以观察细胞存活率,从而确定有效杀死正常细胞的药物最小浓度。如果细胞耐药性比较强,需要每日监测细胞,观察存活细胞率,约2-3天更换新鲜的筛选培养基,一般4-10天内即可确定嘌呤霉素的最小浓度。


二、建议使用浓度

  哺乳动物细胞:1-10μg/mL,最佳浓度需根据嘌呤霉素剂量反应曲线来确定。

  大肠杆菌:LB琼脂培养基筛选稳定转化pac基因的大肠杆菌,使用浓度为125μg/mL。

  Ø使用嘌呤霉素筛选大肠杆菌稳转株需要精确的pH值调节,并受宿主细胞本身的影响。


三、哺乳动物稳定表达细胞株的筛选

  转染含有pac基因的质粒或者感染含有该基因的病毒后,即可使用嘌呤霉素筛选稳定表达株。

  1.细胞转染或感染48小时后,将细胞置于含有适当浓度嘌呤霉素的新鲜培养基中培养,此为处理组。

  Ø当细胞处于分裂活跃期时,抗生素作用明显。细胞过于密集,抗生素产生的效力会明显下降,所以细胞的密度最好不超过35%。转染或感染48小时后,如果细胞过密也可以消化后重新接种细胞,培养过夜后即可进行嘌呤霉素筛选。

  Ø建议同时做一个空白正常细胞的对照组。

  2.每隔2-3天,更换含有嘌呤霉素的培养基。

  3.筛选2-10天后,对照组正常细胞应该100%死亡,处理组中存活的细胞为表达pac基因的细胞。然后根据实验目的进行多克隆或单克隆细胞的筛选。

  Ø应每日进行细胞生长状态的观察。嘌呤霉素的筛选至少需要24小时,有效浓度嘌呤霉素的筛选周期一般在2-10天。

  4.待细胞可以稳定生长后,嘌呤霉素的浓度可以减半用于后续的培养。在得到稳定表达细胞株后,一般建议嘌呤霉素也须持续加入,并2-3天更换含有嘌呤霉素的新鲜培养液。



06/适用范围

  Puromycin嘌呤霉素(10mg/mL)普遍应用于稳定细胞株的筛选和维持,也可以用来筛选转化携带pac基因质粒的大肠杆菌菌株、酵母菌株等。



07/注意事项

  1.为了您的健康安全,请规范操作,穿戴实验服与手套开展实验。

  2.本产品对人体有害,操作时请小心,并注意有效防护以避免直接接触人体或吸入体内。

  3.本产品仅供科研使用,请勿用于临床诊断及治疗。



08/Puromycin 嘌呤霉素(10 mg/mL)实验案例分析

  1.提前一天使用10cm细胞培养皿培养ViralStarsLentivirusPackagingCellLine(CL110001),待细胞密度为75%左右开始包装慢病毒。

  2.使用ViralStarsLPLentivirusPackagingKit(LP110-10)进行慢病毒包装,具体步骤参考LP110-10产品说明书。

  3.收集慢病毒上清液,300xg离心10分钟以除去细胞碎片,0.22μm滤器过滤,使用ViralStarsLCLentivirusConcentrationSolution慢病毒浓缩试剂盒(LC110R)进行20倍浓缩,使用1mLViralStarsLSLentivirusStorageSolution(LS110R)重悬慢病毒颗粒。

  4.提前一天在24孔板中铺Hela细胞,使用上述制备的慢病毒感染目的细胞HeLa。在EP管中做病毒10倍梯度稀释,连续6个稀释梯度。稀释方法如下:准备6个⽆菌EP管,每个EP管中加⼊450μL新鲜的*培养基(含10μg/mLpolybrene),取待测定病毒液50μL加⼊到第⼀个EP管中(标记50μL),混匀后取50μL病毒稀释液加⼊到第⼆个EP管中(标记5μL),以此类推,直到稀释到最后⼀管。弃去24孔板中原有的培养基,将稀释好的病毒依次加入孔中,并做好标记,⼩⼼操作,不要吹起细胞,置于培养箱中培养16h。

  5.慢病毒感染16h后,吸去带病毒的培养基,在每个孔中再加入
500μL
预热的新鲜*培养基。

  6.使用含puromycin(5μg/mL)的筛选培养基进行筛选,对筛选7天后的细胞进行结晶紫染色,并拍照记录,实验结果如图2所示。


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09/其他相关产品

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